Orientaciones para la Vigilancia, Prevención y Control
del Virus del Nilo Occidental
(13 septiembre 2002)
Antecedentes |
Vigilancia epidemiológica |
Definiciones de caso |
Prevención y Control |
Bioseguridad |
Reservorios y Vectores
Debido al riesgo de la propagación de la infección del Virus del Nilo Occidental a los países de la Región, y basado en los resultados del Curso de "West Nile Virus Workshop" realizado por la OPS en el CAREC en Trinidad y Tobago en los días 29 de abril a 3 de mayo 2002, resumimos a continuación orientaciones generales sobre las recomendaciones de OPS sobre la vigilancia del Virus del Nilo Occidental.
El objetivo es detectar oportunamente la actividad Virus del Nilo Occidental en las poblaciones de reservorios y vectores para tomar las medidas apropiadas en cuanto a la vigilancia ampliada, control de la transmisión, control de vectores y la comunicación social.
A finales del verano de 1999, los primeros casos en humanos de encefalitis causados por el Virus del Nilo Occidental fueron documentados en los EUA. El descubrimiento de mosquitos infectados por el virus durante el invierno de 1999-2000 anticipó la actividad viral reincidente para la siguiente primavera y se lanzó el control de vectores y vigilancia de enfermedades en la ciudad de Nueva York y las áreas circundantes. Durante el inicio del verano de 2000. Estos esfuerzos de vigilancia fueron dirigidos a la identificación y documentación de las infecciones por Virus del Nilo Occidental en las aves, los mosquitos y equinos así como animales centinelas que podrían predecir la aparición de la enfermedad en humanos. Hasta agosto de 2002, la actividad del Virus del Nilo Occidental se había identificado en 39 estados y el Distrito de Columbia de los EUA y en tres provincias de Canadá. Se ha identificado con la infección con el Virus del Nilo Occidental, aves (más de 78 especies), mosquitos (14 especies), caballos y algunos otros mamíferos y en humanos.
Las poblaciones que deben ser estudiadas para la implementación de actividades de vigilancia en países en los que no se ha detectado la circulación del Virus del Nilo Occidental, en orden de prioridad, son las aves, los mosquitos, los caballos y finalmente los seres humanos.
1. Vigilancia activa en aves
Se dirige a monitorear la actividad del arbovirus en las aves salvajes y aves centinelas. La vigilancia de los cuervos muertos en particular y otros miembros de la familia Corvidae es un indicador para detectar la presencia del Virus del Nilo Occidental en una zona geográfica. Sin embargo, para algunas áreas, otras especies de aves salvajes podrán ser las primeras aves identificadas con infección por el Virus del Nilo Occidental. (Anexo 1)
Se requiere la recolección de aves recientemente muertas (menos de 48 horas) y el envío de estos restos (preservados en bolsas de plástico sobre hielo) al Laboratorio de Referencia Nacional.
2. Vigilancia activa de mosquitos
La vigilancia de las poblaciones de mosquitos busca identificar los vectores potenciales, vigilar las densidades de población de estos vectores en una zona, y detectar el Virus del Nilo Occidental u actividad de otros arbovirus. En 1999, en los EUA infecciones por Virus del Nilo Occidental se encontraron principalmente en mosquitos que se alimentan en aves. En 2000, también se identificaron en mosquitos que se alimentan en mamíferos infectados por el Virus del Nilo Occidental.
Las encuestas se enfocarán principalmente a las poblaciones adultas de Culex spp., seguida de la vigilancia del Aedes spp. y otras especies en las zonas donde se notificaron casos probables o confirmados en aves, animales o humanos así como en zonas con un alto riesgo de la transmisión del Virus del Nilo Occidental, como jardines zoológicos, reservas biológicas, puntos de poso o alimentación de aves migratorias, etc. (Anexo 2)
3. Vigilancia veterinaria pasiva y ampliada
Como un sistema de apoyo para detectar la presencia del Virus del Nilo Occidental y vigilar el grado de su transmisión fuera del ciclo ave-mosquito, se desarrolla la vigilancia pasiva ampliada (vigilancia pasiva con alerta a veterinarios) de enfermedad neurológica en los caballos principalmente y otros mamíferos.
Se requiere la investigación de los casos en caballos con manifestaciones neurológicas de encefalitis (como indiferencia, ataxia, incoordinación y tambaleo, caída de labio inferior, parálisis parcial o muerte) y el envío de muestras de suero y de cerebro de estos al Laboratorio de Referencia Nacional para la detección de anticuerpos y/o el aislamiento del virus. También es útil enviar segmentos de cerebro, y medula cervical (en formol) para histopatología. En algunos países es necesario hacer diagnóstico diferencial de la rabia.
4. Vigilancia de humanos pasiva y ampliada
Como un sistema de apoyo para detectar la actividad del Virus del Nilo Occidental, se puede desarrollar una vigilancia pasiva ampliada (vigilancia pasiva por medio de alerta a los servicios de salud) de casos humanos de la encefalitis vírica y, si los recursos permiten, la meningitis aséptica.
El objetivo de la vigilancia humana es detectar casos graves de la infección por el Virus del Nilo Occidental para poder ofrecer tratamiento.
- Un caso sospechoso es cualquier persona que presente un cuadro clínico de fiebre y manifestaciones neurológicas graves (de meningitis aséptica a encefalitis) de etiología desconocida.
- Un caso probable se define como un caso sospechoso, con uno o más de los siguientes criterios:
- demostración de anticuerpos IgM séricos contra el Virus del Nilo Occidental por ensayo inmumoenzimático (ELISA);
- demostración de un título elevado de anticuerpos IgG específicos contra el Virus del Nilo Occidental en el suero en fase de convalecencia (sometido a tamizaje por ELISA, o inhibición de la hemoaglutinación (IH) y confirmado por neutralización de reducción de placas (PRNT).
- Un caso confirmado es un caso probable con uno o más de los siguientes criterios:
- aislamiento del Virus del Nilo Occidental o la detección del antígeno del Virus del Nilo Occidental o del genoma vírico en tejido, suero, líquido cefalorraquídeo u otros fluidos corporales;
- demostración de seroconversión (un aumento al cuádruplo o más del título) de los anticuerpos al Virus del Nilo Occidental en la neutralización por reducción en placas (PRNT) en suero o muestras de líquido cefalorraquídeo pareadas (agudo y convaleciente);
- demostración de anticuerpos IgM al Virus del Nilo Occidental por MAC-ELISA en muestra de líquido cefalorraquídeo en fase aguda.
Nota: Detección de IgM específica de Virus del Nilo Occidental y/o a anticuerpos IgG (por ELISA) en un único suero o muestra de líquido cefalorraquídeo debe ser confirmada por cualquiera de las otras técnicas anteriores.
Medidas de Prevención y Control
Prevención
Actualmente, la manera más eficaz de prevenir la transmisión del Virus del Nilo Occidental y otros arbovirus a los seres humanos y otros animales, o de controlar una epidemia una vez que la transmisión ha empezado, es reducir la exposición de la población al mosquito mediante el control de los vectores y/o a través de barreras hombre/vector. Para prevenir la enfermedad en animales y humanos, los servicios de salud pública deben tener capacidades adecuadas para el control de vectores.
Un componente crítico de cualquier programa de prevención y control de las enfermedades de transmisión vectorial es la educación pública acerca de estas enfermedades, cómo se transmiten y cómo prevenir o reducir el riesgo de la exposición. La educación pública debe utilizar la ciencia del comportamiento y métodos de mercadeo social para comunicar eficazmente la información a las poblaciones indicadas.
Existen algunas precauciones que individuos pueden tomar para reducir la exposición del virus en los hogares:
- Colocar telas metálica en las ventanas y cerrar brechas en las casas donde puedan entrar los mosquitos.
- Usar pantalones largos y camisas de manga larga particularmente cuando se permanecerá fuera de las casas por períodos prolongados, particularmente cuando hay actividad de mosquitos.
- Minimizar actividades fuera de casa durante períodos crepusculares, período de mayor picadas de mosquitos (amanecer y anochecer).
- Usar repelentes de insectos con hasta 35% del ingrediente activo DEET para adultos y de hasta 20% para niños.
El uso de repelentes herbales o ultrasónicos no son efectivos contra la picada de mosquitos.
Control
La manera más eficaz y económica de controlar los mosquitos es mediante la reducción de fuentes larvarias. La experiencia indica que esto se hace mediante los programas de reducción de criaderos, que se vigilen a las poblaciones de mosquitos e inicien control antes que la transmisión de enfermedades a los seres humanos y animales domésticos ocurra. Estos programas también pueden usarse como la respuesta de urgencia de primera línea para el control de mosquitos en caso de que una actividad vírica se detecte en un área o se notifique la enfermedad en humanos. El control de las poblaciones de mosquitos adultos mediante la aplicación aérea de los insecticidas se reserva generalmente como un último recurso.
Además de la prevención de exposición a los mosquitos, en Estados Unidos el USDA-APHIS ha concedido una licencia provisional para el uso de una vacuna de virus inactivado para caballos.
Las precauciones universales para la necroscopia animal deben usarse como: la protección personal (usando ropa protectora, guantes, protectores faciales y protección de ojos), el desecho de aves y animales muertos o muestras contaminadas y la desinfección de todos los elementos después del procesamiento de muestras.
Para el almacenamiento y transporte de especímenes, sírvase referirse a las Normas de Bioseguridad de la OMS.
Esta información ha sido adaptada del material utilizado en el Taller "West Nile Virus Surveillance Workshop" que se llevó a cabo en Trinidad y Tobago, CAREC, en abril/marzo de 2002 con el apoyo del CDC. HCP/HCT, HCP/HCV y HSP/HSE, marzo 2002.
Reservorios y vectores (Anexos)
Anexo 1: Especies de Aves y Animales de las cuales se ha aislado el Virus del Nilo Occidental
Free-Ranging Native North American Species
(Pájaros nativos silvestres de Norteamérica)
| Bittern, Least Ixobrychus sinensis | Jay, Blue Cyanocitta cristata |
| Blackbird, Red-winged Agelaius phoeniceus | Kestrel, American Falco sparverius |
| Bluebird, Eastern Sialia sialis | Killdeer Charadrius vociferus |
| Cardinal, Northern Cardinalis cardinales | Kingfisher, Belted Ceryle alción |
| Catbird, Gray Dumetella carolinensis | Merlin Falco columbarius |
| Chickadee, Black-capped Poecile atricapillus | Mockingbird, Northern Mimus, polyglottos |
| Cormorant, Double-crested Phalacrocorax auritus | Titmouse, Tufted Chordeiles minor |
| Cowbird, Brown-headed Molothrus ater | Ovenbird Seiurus aurocapillus |
| Crow, American Corvus brachyrhynchos | Owl, Great Horned Bubo virginianus |
| Crow, Fish Corvus ossifragus | Phoebe, Eastern Sayornis phoebe |
| Dove, Mourning Zenaida macroura | Rail, Virginia Rallus limicola |
| Duck, Mallard Anas platyrhynchos | Raven, Common Corvus corax |
| Finch, House Carpodacus mexicanus | Robin, American Turdus migratorius |
| Flicker, Northern Colaptes auroatus | Sanderling Calidris alba |
| Goldfinch, American Carduelis tristis | Skimmer, Black Rynchops niger |
| Goose, Canada Branta canadensis | Sparrow, Song Melospiza melodia |
| Grackle, Common Quiscalus quiscula | Thrush, Hermit Catharus guttatus |
| Grouse, Ruffed Bonasa umbellus | Thrush, Wood Hylocichla mustelina |
| Gull, Great Black-backed Larus marinus | Turkey, Wild Meleagris gallopavo |
| Gull, Herring Larus argentatus | Turnstone, Urdí Arenaria interpres |
| Gull, Ring-billed Larus delawarensis | Veery Catharus fuscescens |
| Hawk, Broad-winged Buteo platypterus | Vulture, Black Coragyps atratus |
| Hawk, Cooper's Accipiter cooperii | Warbler, Blackpoll Dendroica striata |
| Hawk, Red-tailed Buteo jamaicensis | Warbler, Canada Wilsonia canadensis |
| Hawk, Sharp-shinned Accipter striatus | Warbler, Yellow-rumped Dendroica coronata |
| Heron, Great Blue Ardea herodias | Warbler, Black-throated Blue Dendroica caerulescens |
| Heron, Green Butorides virescens | Waxwing, Cedar Bombycilla cedrorum |
| Hummingbird, Ruby-throated Archilochus colubris |
Captive North American Bird Species
(Pájaros norteamericanos cautivos)
| Crane, Sandhill Grus canadensis | Magpie, Black-billed Pica pica |
| Eagle, Bald Haliaeetus leucocephalus | Night-Heron, Black-crowned Nycticorax nycticorax |
| Gull, Laughing Larus atricilla | Owl, Snowy Nyctea scandiaca |
Other Free-Ranging Bird Species
(Otros Pájaros Silvestres)
| Dove, Rock (pigeon) Columba livia | Starling, European Sturnus vulgaris |
| Pheasant, Ring-necked Phasianus colchicus | Swan, Mute Cygnus olor |
| Sparrow, House Passer domesticus |
Free-Ranging Mammal Species
(Espécies de mamíferos silvestres)
| Bat, Big brown Eptesicus fuscus (Murciélago grande) | Raccoon Procyon lotor |
| Bat, Little brown Myotis lucifugus (Murciélago pequeño) | Skunk, Striped Mephitis mephitis |
| Chipmunk, Eastern Tamias striatus |
Pet and Other Domesticated Species
(Animales de estimación y otros animales domésticos)
| Cat (gato doméstico) | Chicken (gallina) |
| Dog (perro doméstico) | Turkey, domestic (pavo doméstico) |
| Rabbit, domestic (Conejo doméstico) | Peacock (Pavo Real doméstico) |
| Horse (caballo) | Goose, domestic (Ganso doméstico) |
| Parakeet (periquito) | |
| Macaw (guacamayo o arara) Ara spp | |
| Cockatoo (loro blanco) | |
| Cockatie | |
| Finch |
Exotic Species housed in Zoos
(Animales Exóticos en Zoológicos)
| Cormorant, Guanay (pato cuervo) | Pheasant, Himalayan Impeyan (Faisana de las Himalayas) |
| Duck Bronze-winged (pato de alas bronceadas) | Tragopan Blythe's (Trogopán de Blythe) |
| Flamingo, Chilean (Flamenco Chileno) |
Anexo 2: Espécies de mosquitos de las cuales se ha aislado el
Virus del Nilo Occidental
| Aedes albopictus | Aedes cinereus |
| Aedes vexans | Anopheles barberi |
| Anopheles punctipennis | Anopheles quadrimaculatus |
| Coquillettidia perturbans | Culex pipiens |
| Culex restuans | Culex nigripalpus |
| Culex quinquefasciatus | Culex salinarius |
| Culiseta melanura | Ochlerotatus atlanticus |
| Ochlerotatus atropalpus | Ochlerotatus canadensis |
| Ochlerotatus cantator | Ochlerotatus japonicus |
| Ochlerotatus sollicitans | Ochlerotatus taeniorhynchus |
| Ochlerotatus tormentor | Ochlerotatus trivittatus |
| Orthopodomyia signifera | Psorophora columbiae |
| Psorophora ferox | Uranotaenia sapphirina |
Para propósitos de anunciar o distribuir, el documento anterior se puede bajar en formato Word o PDF.
Hoja informativa sobre el Virus del Nilo Occidental
Sitios relacionados, Virus del Nilo Occidental (en inglés)